Производство кератиноцитов для непосредственной защиты против бактериальных патогенов кожи

Marissa H. Braff, Mohamed Zaiou, Joshua Fierer, Victor Nizet, and Richard L. Gallo

Перевод с английского.


Источник: Педиатрический факультет,Университет Калифорнии.
http://journal.shouxi.net/qikan/article.php?id=195177


ВВЕДЕНИЕ

    Функции кожи и как барьера и как иммунного органа способного оповещать тело об опасности микробной атаки. Кератиноцит (КЦ), основной тип клеток эпидермиса, традиционно считалось, участие в кожной иммунной защиты двумя способами: путем предоставления физического барьера для вторжения и через высвобождение медиаторов воспаления, которые вербуют фагоцитарные лейкоциты к очагам инфекции (3,65).Тем не менее, все чаще признается, что кератиноциты производят молекулы похожие на антимикробные пептиды (AMPS), используемых нейтрофилов и макрофагов, чтобы убить потенциально патогенных микроорганизмов (8, 14, 16, 18, 43, 49). Эти усилители, как правило, небольшие, катионные, амфипатический молекулы, способы действием разрушать микробные оболочки и модификации клетки-хозяина воспалительных явлений (30, 48).Производство похожих на эпителиальные клетки может предоставлять дополнительный иммунный барьер защиты, но специфической биологической значимости не доказано.

    Несколько семей усилителей были хорошо изучены в кератиноцитах, в том числе и cathelicidins-дефенсинах.С athelicidin (hCAP18/LL-37) и человеческого-дефенсина-2 и -3 (HBD-2 и -3) индуцируются в кератиноциты при воспалении, в то время HBD-1 является конститутивно синтезированные (18, 51). В дополнение к кератиноцитов, cathelicidin является производным от других клеток в коже, в том числе нейтрофилов (57), тучных клеток (15), и экзокринный железы (39). Множество кожных усилителей и сотовых источников способствовало неполное понимание относительного вклада кератиноцитов cathelicidin к кожным обороны барьер.

    Общие воспалительные заболевания кожи, таких как псориаз и атопический дерматит (АД) имеют фенотипы, можно предположить, что различия в AMP производстве могут непосредственно влиять на восприимчивость к инфекции (11, 33, 46). Выражение уровней cathelicidin, HBD-2, и HBD-3 повышается в кератиноцитах псориатических поражений, и вторичной инфекции встречается крайне редко (18, 24, 25, 27, 44). В отличие от больных АД проявляется относительно дефицит cathelicidin и HBD-2 и демонстрируют повышенную восприимчивость к бактериальным и вирусным подкожным суперинфекциям(28, 33, 34, 46). Интересно, что нет явных дефектов нейтрофилов в этих воспалительных заболеваний, предполагая, что выражение пож на эпителиальные клетки могут быть ответственны за наблюдаемые различия в восприимчивости к инфекциям. Двойная функциональность этих усилителей в противомикробное и иммуномодулирующее деятельности подчеркивает важность правильного выражения AMP для оптимальной иммунной защиты кожи.

  Критической функции cathelicidin пож в коже защиту от бактериальной инфекции было показано в cathelicidin-дефицитных мышей (28, 43). Нейтрофилы хранить обильные cathelicidin в его предшественником форме, и их важность для кожный иммунитет также был хорошо документированы. Тем не менее, вклад кератиноциты, которые производят низкой, конститутивной уровней cathelicidin по сравнению с нейтрофилами и upregulate выражение на ранение или бактериальной проблема, пока неясно (16). Это исследование изложенных для оценки антимикробной активности и кожных иммунной обороноспособности кератиноцитов cathelicidin против двух ведущих человеческих патогенов, которые заражают как нормальных, так и с ослабленным кожу, стрептококк группы А и золотистый стафилококк. Представленные здесь результаты показывают, что кератиноцитов синтеза и обработки cathelicidin способствовать врожденный иммунитет кожи, образуя прямой антимикробный барьер обороны, который дополняет циркулирующих иммунных клеток

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Бактериальные штаммы и условия культивирования. ГАЗ штамм NZ131, хорошо известных дикого типа (WT) серотипа М49 кожи человека изолировать, которые восприимчивы к cathelicidin пож (43), было распространено в триптического бульоном соевый (БСЭ). Золотистого стафилококка WT штамм SA113 (АТСС 35556) и его изогенных lysophosphatidylglycerol синтазы-дефицитных мутантов ФЗПНМ (47) также распространяются в БСЭ. Бактерии выращивали на логарифмической фазы (оптическую плотность при 600 нм [OD600], 0,9 [108 КОЕ / мл]) и разводят в соответствующую среду для использования в мышь инфекционных проблем или кератиноцитов антимикробных анализов.

    Нейтрофилов истощения. По возрасту и полу соответствием взрослых Cnlp + / + и Cnlp / 129SVJ мышам вводили внутрибрюшинно (ф) дозу (200 мкл) или циклофосфамид (250 мг / кг массы тела) или моноклональных антител RB6-8C5 (450 мкг / мшь ), разрушают циркулирующих нейтрофилов (55, 59). Управление однопометников вводили 200 мкл фосфатно-солевом буфере (PBS), Для оценки длительности нейтропении, периферической крови из-под контроля и нейтрофилов обедненный мышей были собраны в сутки в течение 7 дней с подкожной вены в Microtainer труб с ЭДТА (Becton Dickinson, Франклин озер, NJ). Гематологические анализы были проведены на Core UCSD гематологии фонда с использованием системы Hemavet анализа (CDC технологий).

     Инфекций Подкожный ГАЗ. Мышь инфекции ГАЗ проводились на основе изменений в ранее описанной модели (43). Двадцать четыре часа после нейтрофилов истощения, спины нейтрофилов обедненные и контрольных мышей были бритые и волосы удаляли химической депиляции (Nair). Мыши были заражены подкожно 200 мкл сублетальных доз лог-газовой фазы (1 х 105 до 5 х 105 КОЕ) в комплексе с Cytodex бисером в качестве перевозчика. Цифровые фотографии повреждений кожи были взяты ежедневно, и размер повреждения измерялась с помощью NIH Imager программного обеспечения. Поражения были биопсию на 7 день postinfection для циклофосфамид обработанных мышей и на 3 день postinfection на антитела RB6-8C5-мышей. Изолированные поражения гомогенизировали в PBS использованием PowerGen 125 портативных гомогенизатор (Fisher Scientific, Питтсбург, штат Пенсильвания), для восстановления бактерий. Разведения высевали на кровяной агар и культивировали в течение ночи при 37 ° С для перечисления КОЕ. Чтобы подтвердить, что нейтрофилов населения оставалась подавленной течение инфекции периода, кожные повреждения из-под контроля и нейтрофилов обедненный мышей биопсию ежедневно и фиксировали в формалине для гистологического анализа. Гематоксилин-эозином и (H & E) окрашивание проводилось за счет базового фонда UCSD гистологии. Изображения были получены с использованием микроскопа Olympus BX41.

    MIC анализов. Для оценки потенциальной антимикробной активности cathelicidin в клеточной культуральной среде, MIC тесты проводились на основе изменений в ранее описанным методом (39). Короче говоря, золотистого стафилококка и WT ФЗПНМ штаммы выращивали для входа фазы и разводят в БСЭ или антибиотиков EpiLife культуре клеток среды (общим объемом 50 мкл) в присутствии или отсутствии синтетических человека cathelicidin LL-37 пептида в 96-луночного с круглым дном культуры тканей пластин (Corning Inc, Нью-Йорк). LL-37 был использован в концентрации 2 мкМ, 4 мкм, 8 мкМ и 16 мкМ. После инкубации при температуре 37 ° С в течение 4 часов или на ночь, поглощения было читать как OD600 используя спектрофотометр (SpectraMax Plus 384; Molecular Devices, Калифорния) и разведения высевали на агар триптического сои (TSA) и инкубировали в течение ночи при температуре 37 ° C. КОЕ были количественно, и процент выживания живых бактерий была рассчитана как (выживаемость клеток после инкубации с пептид) / (выживаемость клеток после инкубации без пептид) х 100.

    Кератиноциты в изоляции и культуры. Человек KC производным от новорожденных крайняя плоть были выращены в бессывороточной EpiLife культуре клеток среды (Каскад биопрепаратов, Portland, OR), содержащий 0,06 мМ Са2 +, 1x EpiLife определенный рост добавка, 50 ед / мл пенициллина, 50 мкг / мл стрептомицина при нормальных тканей условий культивирования. НаСаТ клетки культивировали в среде Дульбекко изменение Орла с 4,5 г / л глюкозы (BioWhittaker; Уолкерсвилл, MD) с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 2 мМ L-глутамина, 50 ед / мл пенициллина, 50 мкг / мл стрептомицина. Чтобы изолировать Cnlp + / + и Cnlp / мышь КЦ, новорожденных мышей 129SVJ были принесены в жертву в течение 4 дней после рождения, до начала роста волос. Кожа была удалена и стерилизуют в Hibiclens антисептическим / антимикробным моющим средством (Zeneca Pharmaceuticals, Уилмингтон, Делавэр). После лечения ночь dispase отделить эпидермиса и дермы, эпидермиса был трипсином в течение 12 мин при 37 ° С до разбивки КЦ. Трипсин нейтрализовали буфер солевой раствор Хэнкса, содержащий 5% Chelex обработанных кальция и подвески KC центрифугировали 10 мин при 1000 мкг для осаждения клеток. Мышь KC ресуспендировали и выросли в бессывороточной 154CF кератиноцитов культуральной среде (Каскад биопрепаратов, Portland, OR), содержащий 0,05 мМ Са2 +, 1x человеческих кератиноцитов дополнения роста, 50 ед / мл пенициллина, 50 мкг / мл стрептомицина.

    Cathelicidin лентивирус производства. Человек лентивирус cathelicidin конструкции были получены, как описано выше для свиней cathelicidin PR-39 (32). Одним словом, человека cathelicidin кДНК (23), соответствующими либо полнометражный hCAP18 предшественника (сигнальный пептид плюс cathelin плюс LL-37), cathelin белка, или зрелая LL-37 пептида усиливался с помощью ПЦР и вставляется в pLenti6/V5 /ТОПО вектор (Invitrogen, Карлсбад, Калифорния) для создания следующих конструкций под контролем промотора цитомегаловируса: pLV/hCAP18, PLV / Cathelin и pLV/LL-37. Вставка и ориентацию генов cathelicidin были подтверждены плазмиды секвенирования. Конструкции были cotransfected смесью упаковки плазмид (pLP1, pLP2 и ПЛП / VSV-G) в человеческих эмбриональных почек 293T клеток. Трансфекции в клетки 293T (1,5 х 106) были проведены в свободной от сыворотки среде с использованием Lipofectamine (Gibco, Карлсбад, Калифорния). Через 12 ч, трансфекции среду заменяли полной среде и клетки были дополнительно выдерживают в течение 72 ч. Вирусный Супернатант собирают и фильтруют (0,45 мкм пор по размерам фильтр). PLV / галлон был использован в качестве положительного контроля. Выражение-галактозидазы забил 5-бром-4-хлор-3-индолил - D-галактопиранозид (X-Gal) окрашивания. Титры были рассчитаны путем подсчета очагов синих клеток на лунку и деления на коэффициент разбавления. В НаСаТ клеток, контроль PLV / LacZ титр примерно 5 х 107 трансдуцирующих ед / мл. pLV/hCAP18, PLV / Cathelin и pLV/LL-37 были также производства переходных трансфекции 293T клеток. Вирусные акции хранились при температуре 80 ° C.

    НаСаТ ячейки трансдукции. Трансдукции НаСаТ клеток с лентивирус акции проводили, как описано ранее (32). Короче говоря, НаСаТ Клетки выращивались в 6-луночных примерно от 30 до 50% слияния.До инфекции, культуральная среда была заменена свободной от сыворотки среде с 8 мкг / мл polybrene. После добавления среды (300 мкл) с 293T клетки, инфицированные hCAP18, cathelin, LL-37, или LacZ, клетки инкубировали при 37 ° С в течение ночи. Двадцать четыре часа спустя, среду заменяли на питательной среде без polybrene. После расширения в культуре в течение 48 до 72 ч, НаСаТ клетки были собраны и проанализированы на cathelicidin выражение путем обратной транскрипции-ПЦР и Вестерн-блоттинга. Трансдукция эффективность была проанализирована визуализация-галактозидазы выражения в контрольной группе.

    П. И. анализов. KC человек были предварительно обработанных в присутствии или отсутствии ингибиторов протеазы (ИП) разводят в антибиотикам свободную ячейку культуральной среде в течение 24 ч до оценки антимикробной активностью в отношении ФЗПНМ S.aureus. ЭДТА без PI коктейль, используемый подавляет различные серина и цистеина протеазы (Roche, Indianapolis, IN).

    Радиальные анализов диффузии. Log-фазы золотистого стафилококка ФЗПНМ (10 мкл) вносили в стерильные агар верхней триптон (10 мл) при 50 ° C (1% агарозном-0.5% триптон). Бактериальной суспензии, содержащей около 105 КОЕ / мл бактерий, выливали в пластинах и позволила закрепить при комнатной температуре. Лунки перфорированные (2 мм) в пластинах помощью пипетки Пастера. KC человек (с или без 24-часового предварительной обработки PI) были извлечены в 1 М HCl-1% трифторуксусной кислоты, лиофилизированные и ресуспендировали в стерильной воде. Bicinchoninic анализов кислоты были проведены, чтобы подтвердить эквивалент загрузки белка, и 2 мкл каждого экстракта KC или контроль был загружен в трех экземплярах скважин. Синтетические LL-37 пептида служил положительного контроля и KC буфера для экстракции служили в качестве отрицательного контроля. Пластины инкубировали при 37 ° С в течение ночи, а фотографии были сделаны использованием ChemiImager 4400. Диаметр каждой зоне бактериального ингибирования роста измерялась с помощью NIH Imager программного обеспечения.

    Кератиноцитов анализов КОЕ. KC пассировали в отсутствие антибиотиков и культивировали до слияния в 24-луночных тканевой культуры. Чтобы оценить способность KC, чтобы убить бактерии, 104 КОЕ / мл лог-фазе золотистого стафилококка ФЗПНМ был добавлен в культуре клеток скважин содержащие антибиотиков среды. Бактерии центрифугировали на клетки при 350 мкг в течение 10 мин и инкубировали при 37 ° С в увлажненной 5% CO2-инкубаторы для различных времен. В каждый момент времени, общее содержимое лунок были собраны, высевают на АСП, и инкубировали в течение ночи при температуре 37 ° С для перечисления КОЕ. Управление скважин без KC содержащихся бактерий, выращенных в одинаковых условиях.

    Гентамицин защиты анализа. >Человека и мыши KC выращивали до слияния и инкубировали с 104 или 108 КОЕ / мл лог-фазе золотистого стафилококка WT или ФЗПНМ. Анализы Гентамицин защиты были выполнены на основе ранее описанных методов (22, 36, 42, 66). Короче говоря, бактерий центрифугировали на клетки при 350 мкг в течение 10 мин и инкубировали в течение 2 ч при 37 ° C. KC были затем промывали PBS и обрабатывали 100 мкг / мл гентамицина в течение 1 часа, чтобы убить внеклеточных бактерий. Для сбора внутриклеточных бактерий, KC промывают, трипсином, и лизировали в 0,025% Тритон Х-100-H2O. Лизаты высевали на АСП и инкубировали в течение ночи при температуре 37 ° С для перечисления КОЕ.

 Источники

  •     1. Agerberth, B., J. Charo, J. Werr, B. Olsson, F. Idali, L. Lindbom, R. Kiessling, H. Jornvall, H. Wigzell, and G. H. Gudmundsson. 2000. The human antimicrobial and chemotactic peptides LL-37 and alpha-defensins are expressed by specific lymphocyte and monocyte populations. Blood 96:3086-3093.

        2. Anderson, C. 1985. The effect of selected immunomodulating agents on experimental contact reactions. Acta Derm. Venereol. Suppl. (Stockholm) 116:1-48.

        3. Bals, R. 2000. Epithelial antimicrobial peptides in host defense against infection. Respir. Res. 1:141-150.

        4. Bals, R., M. J. Goldman, and J. M. Wilson. 1998. Mouse beta-defensin 1 is a salt-sensitive antimicrobial peptide present in epithelia of the lung and urogenital tract. Infect. Immun. 66:1225-1232.

        5. Bals, R., X. Wang, Z. Wu, T. Freeman, V. Bafna, M. Zasloff, and J. M. Wilson. 1998. Human beta-defensin 2 is a salt-sensitive peptide antibiotic expressed in human lung. J. Clin. Investig. 102:874-880.

        6. Belaaouaj, A., R. McCarthy, M. Baumann, Z. Gao, T. J. Ley, S. N. Abraham, and S. D. Shapiro. 1998. Mice lacking neutrophil elastase reveal impaired host defense against gram negative bacterial sepsis. Nat. Med. 4:615-618.

        7. Bodey, G. P., M. Buckley, Y. S. Sathe, and E. J. Freireich. 1966. Quantitative relationships between circulating leukocytes and infection in patients with acute leukemia. Ann. Intern. Med. 64:328-340.

        8. Braff, M. H., A. Di Nardo, and R. L. Gallo. 2005. Keratinocytes store the antimicrobial peptide cathelicidin in lamellar bodies. J. Investig. Dermatol. 124:394-400.

        9. Carretero, M., M. Del Rio, M. Garcia, M. J. Escamez, I. Mirones, L. Rivas, C. Balague, J. L. Jorcano, and F. Larcher. 2004. A cutaneous gene therapy approach to treat infection through keratinocyte-targeted overexpression of antimicrobial peptides. FASEB J. 18:1931-1933.

        10. Castano, E., J. L. Rodriguez-Peralto, F. Lopez-Rios, C. Gomez, M. Zimmermann, and L. Iglesias Diez. 2002. Keratinocyte dysplasia: an usual finding after transplantation or chemotherapy. J. Cutan. Pathol. 29:579-584.

        11. Christophers, E., and T. Henseler. 1987. Contrasting disease patterns in psoriasis and atopic dermatitis. Arch. Dermatol. Res. 279(Suppl.):S48-S51.

        12. Cole, A. M., J. Shi, A. Ceccarelli, Y. H. Kim, A. Park, and T. Ganz. 2001. Inhibition of neutrophil elastase prevents cathelicidin activation and impairs clearance of bacteria from wounds. Blood 97:297-304.

        13. Conlan, J. W. 1997. Critical roles of neutrophils in host defense against experimental systemic infections of mice by Listeria monocytogenes, Salmonella typhimurium, and Yersinia enterocolitica. Infect. Immun. 65:630-635.

        14. Cowland, J. B., A. H. Johnsen, and N. Borregaard. 1995. hCAP-18, a cathelin/pro-bactenecin-like protein of human neutrophil specific granules. FEBS Lett. 368:173-176.

        15. Di Nardo, A., A. Vitiello, and R. L. Gallo. 2003. Mast cell antimicrobial activity is mediated by expression of cathelicidin antimicrobial peptide. J. Immunol. 170:2274-2278.

        16. Dorschner, R. A., V. K. Pestonjamasp, S. Tamakuwala, T. Ohtake, J. Rudisill, V. Nizet, B. Agerberth, G. H. Gudmundsson, and R. L. Gallo. 2001. Cutaneous injury induces the release of cathelicidin anti-microbial peptides active against group A Streptococcus. J. Investig. Dermatol. 117:91-97.

        17. Drevets, D. A., T. A. Jelinek, and N. E. Freitag. 2001. Listeria monocytogenes-infected phagocytes can initiate central nervous system infection in mice. Infect. Immun. 69:1344-1350.

        18. Frohm, M., B. Agerberth, G. Ahangari, M. Stahle-Backdahl, S. Liden, H. Wigzell, and G. H. Gudmundsson. 1997. The expression of the gene coding for the antibacterial peptide LL-37 is induced in human keratinocytes during inflammatory disorders. J. Biol. Chem. 272:15258-15263.

        19. Fulton, C., G. M. Anderson, M. Zasloff, R. Bull, and A. G. Quinn. 1997. Expression of natural peptide antibiotics in human skin. Lancet 350:1750-1751.

        20. Gallo, R. L., M. Ono, T. Povsic, C. Page, E. Eriksson, M. Klagsbrun, and M. Bernfield. 1994. Syndecans, cell surface heparan sulfate proteoglycans, are induced by a proline-rich antimicrobial peptide from wounds. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:11035-11039.

        21. Goldman, M. J., G. M. Anderson, E. D. Stolzenberg, U. P. Kari, M. Zasloff, and J. M. Wilson. 1997. Human beta-defensin-1 is a salt-sensitive antibiotic in lung that is inactivated in cystic fibrosis. Cell 88:553-560.

        22. Gresham, H. D., J. H. Lowrance, T. E. Caver, B. S. Wilson, A. L. Cheung, and F. P. Lindberg. 2000. Survival of Staphylococcus aureus inside neutrophils contributes to infection. J. Immunol. 164:3713-3722.

        23. Gudmundsson, G. H., B. Agerberth, J. Odeberg, T. Bergman, B. Olsson, and R. Salcedo. 1996. The human gene FALL39 and processing of the cathelin precursor to the antibacterial peptide LL-37 in granulocytes. Eur. J. Biochem. 238:325-332.

        24. Harder, J., J. Bartels, E. Christophers, and J. M. Schroder. 2001. Isolation and characterization of human beta-defensin-3, a novel human inducible peptide antibiotic. J. Biol. Chem. 276:5707-5713.

        25. Harder, J., J. Bartels, E. Christophers, and J. M. Schroder. 1997. A peptide antibiotic from human skin. Nature 387:861.

        26. Henry, L. B., and T. D. Horn. 2002. Chemotherapy and keratinocytes. J. Cutan. Pathol. 29:575-578.

        27. Henseler, T., and E. Christophers. 1995. Disease concomitance in psoriasis. J. Am. Acad. Dermatol. 32:982-986.

        28. Howell, M. D., J. F. Jones, K. O. Kisich, J. E. Streib, R. L. Gallo, and D. Y. Leung. 2004. Selective killing of vaccinia virus by LL-37: implications for eczema vaccinatum. J. Immunol. 172:1763-1767.

        29. Johnston, D. L., J. H. Waldhausen, and J. R. Park. 2001. Deep soft tissue infections in the neutropenic pediatric oncology patient. J. Pediatr. Hematol. Oncol. 23:443-447.

        30. Kamysz, W., and M. Okroj. 2003. Novel properties of antimicrobial peptides. Acta Biochim. Pol. 50:461-469.

        31. Kristian, S. A., M. Durr, J. A. Van Strijp, B. Neumeister, and A. Peschel. 2003. MprF-mediated lysinylation of phospholipids in Staphylococcus aureus leads to protection against oxygen-independent neutrophil killing. Infect. Immun. 71:546-549.

        32. Lee, P. H., T. Ohtake, M. Zaiou, M. Murakami, J. A. Rudisill, K. H. Lin, and R. L. Gallo. 2005. Expression of an additional cathelicidin antimicrobial peptide protects against bacterial skin infection. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 102:3750-3755.

        33. Leung, D. Y. 2003. Infection in atopic dermatitis. Curr. Opin. Pediatr. 15:399-404.

        34. Leung, D. Y., M. Boguniewicz, M. D. Howell, I. Nomura, and Q. A. Hamid. 2004. New insights into atopic dermatitis. J. Clin. Investig. 113:651-657.

        35. Lowy, F. D. 1998. Staphylococcus aureus infections. N. Engl. J. Med. 339:520-532.

        36. Medina, E., O. Goldmann, A. W. Toppel, and G. S. Chhatwal. 2003. Survival of Streptococcus pyogenes within host phagocytic cells: a pathogenic mechanism for persistence and systemic invasion. J. Infect. Dis. 187:597-603.

        37. Mempel, M., C. Schnopp, M. Hojka, H. Fesq, S. Weidinger, M. Schaller, H. C. Korting, J. Ring, and D. Abeck. 2002. Invasion of human keratinocytes by Staphylococcus aureus and intracellular bacterial persistence represent haemolysin-independent virulence mechanisms that are followed by features of necrotic and apoptotic keratinocyte cell death. Br. J. Dermatol. 146:943-951.

        38. Morrison, V. A., R. J. Haake, and D. J. Weisdorf. 1993. The spectrum of non-Candida fungal infections following bone marrow transplantation. Medicine (Baltimore) 72:78-89.

        39. Murakami, M., T. Ohtake, R. A. Dorschner, B. Schittek, C. Garbe, and R. L. Gallo. 2002. Cathelicidin anti-microbial peptide expression in sweat, an innate defense system for the skin. J. Investig. Dermatol. 119:1090-1095.

        40. Murphy, J. J., R. Granger, G. K. Blair, G. G. Miller, G. C. Fraser, and J. F. Magee. 1995. Necrotizing fasciitis in childhood. J. Pediatr. Surg. 30:1131-1134.

        41. Nakagawa, I., A. Amano, N. Mizushima, A. Yamamoto, H. Yamaguchi, T. Kamimoto, A. Nara, J. Funao, M. Nakata, K. Tsuda, S. Hamada, and T. Yoshimori. 2004. Autophagy defends cells against invading group A Streptococcus. Science 306:1037-1040.

        42. Nizet, V., K. S. Kim, M. Stins, M. Jonas, E. Y. Chi, D. Nguyen, and C. E. Rubens. 1997. Invasion of brain microvascular endothelial cells by group B streptococci. Infect. Immun. 65:5074-5081.

        43. Nizet, V., T. Ohtake, X. Lauth, J. Trowbridge, J. Rudisill, R. A. Dorschner, V. Pestonjamasp, J. Piraino, K. Huttner, and R. L. Gallo. 2001. Innate antimicrobial peptide protects the skin from invasive bacterial infection. Nature 414:454-457.

        44. Nomura, I., E. Goleva, M. D. Howell, Q. A. Hamid, P. Y. Ong, C. F. Hall, M. A. Darst, B. Gao, M. Boguniewicz, J. B. Travers, and D. Y. Leung. 2003. Cytokine milieu of atopic dermatitis, as compared to psoriasis, skin prevents induction of innate immune response genes. J. Immunol. 171:3262-3269.

        45. Novak, M., L. G. Buchannan, and H. Howlader. 1990. Effects of cyclophosphamide and dexamethasone on mast cell populations in Hymenolepis microstoma-infected mice. Parasitology 100:337-343.

        46. Ong, P. Y., T. Ohtake, C. Brandt, I. Strickland, M. Boguniewicz, T. Ganz, R. L. Gallo, and D. Y. Leung. 2002. Endogenous antimicrobial peptides and skin infections in atopic dermatitis. N. Engl. J. Med. 347:1151-1160.

        47. Peschel, A., R. W. Jack, M. Otto, L. V. Collins, P. Staubitz, G. Nicholson, H. Kalbacher, W. F. Nieuwenhuizen, G. Jung, A. Tarkowski, K. P. van Kessel, and J. A. van Strijp. 2001. Staphylococcus aureus resistance to human defensins and evasion of neutrophil killing via the novel virulence factor MprF is based on modification of membrane lipids with L-lysine. J. Exp. Med. 193:1067-1076.

        48. Ramanathan, B., E. G. Davis, C. R. Ross, and F. Blecha. 2002. Cathelicidins: microbicidal activity, mechanisms of action, and roles in innate immunity. Microbes Infect. 4:361-372.

        49. Rosenberger, C. M., R. L. Gallo, and B. B. Finlay. 2004. Interplay between antibacterial effectors: a macrophage antimicrobial peptide impairs intracellular Salmonella replication. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 101:2422-2427.

        50. Singh, P. K., B. F. Tack, P. B. McCray, Jr., and M. J. Welsh. 2000. Synergistic and additive killing by antimicrobial factors found in human airway surface liquid. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 279:L799-L805.

        51. Sorensen, O. E., J. B. Cowland, K. Theilgaard-Monch, L. Liu, T. Ganz, and N. Borregaard. 2003. Wound healing and expression of antimicrobial peptides/polypeptides in human keratinocytes, a consequence of common growth factors. J. Immunol. 170:5583-5589.

        52. Sorensen, O. E., P. Follin, A. H. Johnsen, J. Calafat, G. S. Tjabringa, P. S. Hiemstra, and N. Borregaard. 2001. Human cathelicidin, hCAP-18, is processed to the antimicrobial peptide LL-37 by extracellular cleavage with proteinase 3. Blood 97:3951-3959.

        53. Tanaka, D., K. T. Miyasaki, and R. I. Lehrer. 2000. Sensitivity of Actinobacillus actinomycetemcomitans and Capnocytophaga spp. to the bactericidal action of LL-37: a cathelicidin found in human leukocytes and epithelium. Oral Microbiol. Immunol. 15:226-231.

        54. Tanaka, H., S. Miyazaki, Y. Sumiyama, and T. Kakiuchi. 2004. Role of macrophages in a mouse model of postoperative MRSA enteritis. J. Surg. Res. 118:114-121.

        55. Tepper, R. I., R. L. Coffman, and P. Leder. 1992. An eosinophil-dependent mechanism for the antitumor effect of interleukin-4. Science 257:548-551.

        56. Travers, J. B., D. A. Norris, and D. Y. Leung. 2001. The keratinocyte as a target for staphylococcal bacterial toxins. J. Investig. Dermatol. Symp. Proc. 6:225-230.

        57. Turner, J., Y. Cho, N. N. Dinh, A. J. Waring, and R. I. Lehrer. 1998. Activities of LL-37, a cathelin-associated antimicrobial peptide of human neutrophils. Antimicrob. Agents Chemother. 42:2206-2214.

        58. Tutschka, P. J. 1988. Infections and immunodeficiency in bone marrow transplantation. Pediatr. Infect. Dis. J. 7:S22-S29.

        59. Vassiloyanakopoulos, A. P., S. Okamoto, and J. Fierer. 1998. The crucial role of polymorphonuclear leukocytes in resistance to Salmonella dublin infections in genetically susceptible and resistant mice. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95:7676-7681.

        60. Wilson, C. L., A. J. Ouellette, D. P. Satchell, T. Ayabe, Y. S. Lopez-Boado, J. L. Stratman, S. J. Hultgren, L. M. Matrisian, and W. C. Parks. 1999. Regulation of intestinal alpha-defensin activation by the metalloproteinase matrilysin in innate host defense. Science 286:113-117.

        61. Wood, M. J. 1998. Viral infections in neutropenia?current problems and chemotherapeutic control. J. Antimicrob. Chemother. 41(Suppl. D):81-93.

        62. Yang, D., Q. Chen, A. P. Schmidt, G. M. Anderson, J. M. Wang, J. Wooters, J. J. Oppenheim, and O. Chertov. 2000. LL-37, the neutrophil granule- and epithelial cell-derived cathelicidin, utilizes formyl peptide receptor-like 1 (FPRL1) as a receptor to chemoattract human peripheral blood neutrophils, monocytes, and T cells. J. Exp. Med. 192:1069-1074.

        63. Yang, D., O. Chertov, S. N. Bykovskaia, Q. Chen, M. J. Buffo, J. Shogan, M. Anderson, J. M. Schroder, J. M. Wang, O. M. Howard, and J. J. Oppenheim. 1999. Beta-defensins: linking innate and adaptive immunity through dendritic and T cell CCR6. Science 286:525-528.

        64. Zaiou, M., V. Nizet, and R. L. Gallo. 2003. Antimicrobial and protease inhibitory functions of the human cathelicidin (hCAP18/LL-37) prosequence. J. Investig. Dermatol. 120:810-816.

        65. Zanetti, M. 2004. Cathelicidins, multifunctional peptides of the innate immunity. J. Leukoc. Biol. 75:39-48.

        66. Zaretzky, F. R., and T. H. Kawula. 1999. Examination of early interactions between Haemophilus ducreyi and host cells by using cocultured HaCaT keratinocytes and foreskin fibroblasts. Infect. Immun. 67:5352-5360.

  •  

    1.